En Asia y en algunos
países americanos como Estados Unidos, el cultivo experimental de diferentes
especies de pargos (Familia Lutjanidae) se realiza con relativo éxito, entre
estos países están Martinica, Cuba y Venezuela (Watanabe et al.,1998; Thouard
et al., 1989; Colura et al., 1991. citados por Valverde y Gamboa, 2003), siendo
una realidad comercial en Singapur, Filipinas y Tailandia, donde se cultiva en
jaulas y estanques el pargo manglero Lutjanus argentimaculatus y el pargo dorado
L. mahogoni con excelentes resultados (Garret ,1994; Chaitanawisuti y
Piyatiratitivorakul 1994, citados por Valverde y Gamboa 2003 ); estas especies
según literatura crece bien a densidades de 100 a 200 individuos/m3 y se
reproducen en cautiverio, ya sea espontáneamente o utilizando hormonas
gonadotrópicas en dosis muy bajas de 400-1500 UI/kg (Emata et al., 1994;
Singhagraiwan y Doi, 1993. Todos citados por Valverde y Gamboa, 2003). La cría
larvaria de estas especies se ha realizado en forma exitosa utilizando
rotíferos y copépodos como primer alimento, produciendo miles de juveniles para
su engorde en la actividad comercial (Duray et al., 1996); citados por Valverde
y Gamboa, 2003).
Captura y Transporte de reproductores de Pargos (Lutjanus sp).
La talla de los
reproductores maduros tanto machos como hembras oscila entre 21-22 cm. Para la
captura se utilizarán palangres y líneas de fondo con anzuelos; por lo general,
los reproductores se capturan en la madrugada y a profundidades de 10 a 40
metros. El palangre se mantiene en el agua durante una hora y al levantarlo se
hace en forma lenta, para así paliar algo el cambio de presión; a pesar de
esto, los animales no logran regular su presión interna, por lo cual se les
hincha la vejiga natatoria y flotan, nadando erróneamente en la superficie del
tanque donde son colocados, por lo anterior los peces son tomados con la mano
utilizando guantes de tela fina o trapos, para proceder a retirarles el anzuelo
y para introducirles una aguja por un costado y desinflar la vejiga.
Ya dentro
de la embarcación los peces son colocados en tanques de 250 l, en cada uno de
los cuales se transportaran cuatro animales, este recipiente es alimentado con
aire comprimido mantenido en un tanque de buceo. En caso necesario se debe agregar
hielo al agua. Para esta captura y transporte se tiene ya una técnica bien
desarrollada por parte de algunos pescadores, quienes surten con pargos a “las
barras vivas" o restaurantes marinos de ciertos hoteles, donde se tienen
sistemas complejos de acuarios con peces vivos para consumo (Chaparro-Muñoz,
2009).
El transporte hasta el
laboratorio se hace por mar y luego por tierra según el caso. Una vez que los
peces lleguen al laboratorio son colocados para su aclimatación en tanques
de1000 l y llenados con agua previamente filtrada y esterilizada a la que
además se le agregará Furanace en concentración de 1mg/l (Millares et al.,
1979),en cada uno de estos recipientes descansarán cinco reproductores durante
máximo 24 horas; con esto se busca que ellos no reabsorban sus gónadas ante el
estrés del viaje y aclimatación, es decir que se tendrán en cuenta las
recomendaciones y forma de trabajo de Millares et al. (1979).
Selección de Reproductores de Pargos (Lutjanus sp).
Los peces ya aclimatados
a las condiciones de laboratorio son anestesiados con 2- fenoxietanol (150-200
ppm) (Emata et al., 1994) en tanques con agua de 40 l, esto para proceder al
sexaje en base a las características externas; a simple vista las hembras con
relativa madurez se reconocen por que tienen el abdomen ancho y la papila un
poco roja y dilatada, los machos tienen muy comprimida la parte aledaña a la
papila urogenital y además al hacerles leve presión fluye fácilmente el
esperma. Para un análisis mas profundo sobre madurez gonadal en las hembras a
estas se les hace una extracción de ovocitos “ in vitro" o biopsia
ovárica, con ayuda de una cánula de 1,3 mm de diámetro interno y que se
introduce por el oviducto (Chaparro-Muñoz, 2009).
Inducción Hormonal- Desove de Pargos (Lutjanus sp).
· Hembras inducidas con 1000 UI/kg de
PrymogonilâH.
· Hembras inducidas con 1500 UI/kg de
Prymogoniâ.
· Machos inducidos con dosis única de
500 UI/kg de Prymogonilâ.
Las hembras pueden ser
tomadas para ensayar el desove artificial, es decir, que tan pronto los
reproductores inicien el rito sexual se sacarán de los tanques y se les hará el
desove artificial, según las normas universales aplicadas en este caso
(Chaparro, 1994). El número de huevos desovados por cada hembra en cautiverio
puede oscilar entre 6.000 y 72.000 (Millares et al., 1979). Los tanques de 7
metros cúbicos cuentan con aireación permanente distribuida desde el fondo y se
mantendrá un leve recambio.Se espera que el desove ocurra entre las 27 y 40
horas después de aplicada la dosis hormonal Emata (1994), Valverde y Gamboa
(2003), si esto no ocurre entonces se aplicará una nueva dosis de la hormona
utilizada según el caso y se esperará al menos 24 horas mas, según lo observado
en Lutjanus guttatus (Valverde y Gamboa, 2003).
Incubación y Larvicultura de Pargos (Lutjanus sp).
Una vez producido el
desove se aumenta la corriente de agua y la aireación en el tanque, para que
así los huevos que son pelágicos salgan por un rebosadero, luego se colocan en
incubadoras del tipo Woynarovich con capacidad de 70 l, en cada una ellas irán
100 g de huevos. En los dos casos, siempre se mantiene la salinidad constante
entre 36-37 UPS y la temperatura del agua oscila entre 26.5 y 28°C. La
incubación debe durar de 16 a 18 horas, durante este tiempo se hará un estudio
detallado del desarrollo embrionario. Luego de la eclosión de los huevos, las
larvas se mantendrán en tanques rectangulares de
250 l, con densidad de
aproximadamente 30 larvas/l de agua. Por literatura se sabe que el estadio de
larva dura aproximadamente 53-60 horas (Millares et al,1989). Tan pronto las
larvas pasen al estado de postlarvas se llevan a recipientes circulares de 500
l donde es necesario alimentarlas con rotíferos a partir del día 3 hasta el 15,
luego del día 16 al 25 se suministrarán nauplios de Artemia salina, enriquecida
con ácidos grasos, siguiendo la técnica propuesta por Álvarez-Lajonchere y
Hernández (1994), también se toma como base el trabajo de Emata (1994).
Levante de alevinos de Pargos (Lutjanus sp).
En laboratorio se tienen
tanques de 1000 l, colocando en cada uno una densidad de siembra de 50 alevínos
por m3 agua, en este tratamiento los peces reciben una dieta de pescado fresco.
Así mismo, también en condiciones de laboratorio y en otros dos tanques de 1000
l, se colocan 50 alevinos por m3, aquí se alimentarán con concentrado comercial
que contenga un 45% de proteína.
Producción de alimento vivo para las larvas de Pargos (Lutjanidae sp).
Microalgas.
Para
lo referente a
mantenimiento, medios de
cultivo, cepas puras, inóculos, levante masivo y técnicas de contaje, se
utilizan las técnicas explicadas por Álvarez-Lajonchere y Hernández ( 2001).
Para esto se debe contar con un laboratorio climatizado, agua esterilizada y
luz especial (Chaparro-Muñoz, 2009).
Fuente Imagen: http://www.cibnor.org/servicios/dat/labs/elabmu.php?LAB_CLAVE=10014&FUNC=INFO_GEN
Rotíferos y Copépodos
Las cepas puras de estos tipos de alimento son
mantenidas en el laboratorio climatizado. Para la reproducción masiva se
utilizan tanques de fibra de vidrio de 1 m3 de capacidad para los inóculos
mayores y tanques de 2.000 litros, para la producción masiva de rotíferos
(Brachionus) y copépodos (Euterpina o Oithona).Se tiene una estructura
cilindrocónica de 1 m3 para el enriquecimiento de rotíferos con el producto DHA
Super Selco, para lo cual se colocan de 2000-3000 individuos/ml y se adiciona
la mitad de la dosis de emulsión y a las 6-8 horas antes de la cosecha y la
otra mitad a las 3-4 horas antes de la colecta. Para 2000 individuos/ml se
agregan 550mg/l y para los 3000 750 mg/l. Es necesario controlar el oxigeno
durante el proceso, el agua debe ser pasada por filtro de 1 micra y por luz
ultravioleta (Álvarez-Lajonchere y Hernández (2001 ).
Fuente Imagen:http://www.nt.ntnu.no/users/tbardal/turbotman.htm
Artemia salina
En una sala cubierta se colocan incubadoras
cilindro cónicas de fibra de vidrio de 1 m3 cada una, con llave de paso en el
fondo y con sus respectivos soportes; ellas sirven para la incubación de
quistes y el enriquecimiento de Artemia sp. La temperatura se mantiene en 29-30
°C. En los aparatos de incubación se colocan lámparas de 40W. La conservación
de la Artemia eclosionada
se hace en
tanques de fibra
de vidrio de
50 l.
Aislados térmicamente Para la descapsulación
de Artemia se tienen tanques externos de 150 litros; las técnicas de colecta,
lavado y manejo de artemia ya son bien conocidas. El enriquecimiento de artemia
se puede hacer durante 24 horas con Super Selco , ante lo cual se colocan
200-300 nauplios/ml, el agua de mar debe estar desinfectada y se le adiciona la
emulsión a razón de 200-300 mg/l cada 12 horas con fuerte aireación. Al final
del proceso los nauplios son enjuagan con agua abundante y se almacenan a
temperatura menor de 10°C, para minimizar el metabolismo de los PUFA
(Chaparro-Muñoz, 2009).
MADURACIÓN DE REPRODUCTORES EN LABORATORIO, ANTE EL MANEJO DEL
FOTOTERMOPERIODO.
En esta parte se busca formar lotes de
reproductores que maduren en cautiverio, ya que así no se está en dependencia
de la abundancia o no de animales maduros en el medio natural, en un
determinado momento. Los reproductores recién capturados en el medio natural
son aclimatados a las condiciones del laboratorio y sometidos a un tratamiento
profiláctico consistente en baños de agua dulce durante 10 minutos y otro de 15
minutos en formalina a una concentración de 150 ppm (Benetti , 1997).
Los peces
se mantienen durante un mes en condiciones normales del laboratorio ( 35
°/oo.de salinidad, temperatura de aproximadamente 28 °C y fotoperiódo natural);
luego se inician el control de esos parámetros. Este trabajo se hace en tanques
de 20 m3 cada uno, adecuados de tal forma que se pueda hacer un 50% de recambio
diario de agua de mar, debidamente filtrada y esterilizada, se cuenta con
aireación artificial y un sistema de enfriamiento de agua (Chiller). La
salinidad y la temperatura se miden tres veces al día, para hacer los controles
del caso. Para simular el fotoperiodo se utilizan lámparas fluorescentes de 20
Watt colocadas a 50 cm arriba de la superficie de los tanques. Los
reproductores son marcados con pistolas especiales.
Fuente Imagen: http://pisciculturahuililco.cl/produccion.htm
En cada uno de esos tanques
se colocan reproductores capturados en el medio y con los tamaños mayores a la
talla mínima de madurez sexual. Según Álvarez-Lajonchere y Hernández (2001) y
Benetti (1997), un reproductor debe mantenerse en un volumen mínimo 3 m3 de
agua de excelente calidad. Como alimento se suministra a los reproductores,
trozos de pescado, calamar y camarón a razón del 3 % del peso corporal /día.
(Benetti, 1997.)
Teniendo en cuenta lo anterior en cada tanque
se podrán tener 3 hembras y 4 machos. En el momento de siembra los reproductores
no muestran signos externos de madurez, por lo cual los muestreos se inician al
tercer mes de confinamiento; después de este periodo se revisan cada dos meses,
para lo cual se debe bajar el nivel del agua y capturarlos con ayuda de nasas;
evitando en lo posible traumas durante el manipuleo, pesaje y medición. Para
su manejo, los
peces son anestesiados
con 2 fenoxietanol.
Cuando las hembras muestren signos externos de madurez
se les practicará la biopsia ovárica tal y como ya fue descrito, estas se dejan
en los tanques para un posible desove espontáneo o en tal caso serán inducidas
con hormonas con el método ya descrito (Chaparro-Muñoz, 2009).
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